Бластоциста человека (1 неделя гестационного периода): этапы и динамика развития, классификация
Эта статья предназначена только для информационных целей
Содержание этого сайта, включая текст, графику и другие материалы, предоставляется исключительно в информационных целях. Оно не является советом или руководством к действию. По поводу вашего конкретного состояния здоровья или лечения, пожалуйста, проконсультируйтесь с вашим лечащим врачом.
Развитие человеческого эмбриона в течение первой недели — это сложнейший биологический процесс, начинающийся с момента слияния гамет и завершающийся успешным внедрением бластоцисты в стенку матки. В данном материале подробно рассмотрены молекулярные механизмы оплодотворения, хронология дробления клеток по дням, современные системы морфологической оценки качества бластоцист, а также ключевые этапы их имплантации в эндометрий.
Физиология процесса оплодотворения
Процесс оплодотворения начинается при встрече гамет в ампулярном отделе маточной трубы, где сперматозоид преодолевает несколько барьеров для слияния с ооцитом II порядка.
Этапы оплодотворения
- Капацитация. Находясь в женских половых путях, сперматозоид теряет гликопротеиновую оболочку и приобретает способность к оплодотворению.
- Прохождение через лучистый венец. Сперматозоид проходит через внешний слой клеток ооцита благодаря ферменту гиалуронидазе, растворяющему матрикс фолликулярных клеток.
- Акросомная реакция. Достигнув блестящей оболочки (zona pellucida), сперматозоид связывается с гликопротеином ZP3, что запускает акросомную реакцию – высвобождение протеаз (в первую очередь акрозина), позволяющих преодолеть этот барьер.
- Слияние мембран. После проникновения через блестящую оболочку происходит слияние плазматических мембран гамет. Стоит отметить, что в цитоплазму ооцита проникает только головка сперматозоида , а его хвост остается снаружи.
- Зональная реакция. В ответ на проникновение сперматозоида ооцит активируется: кортикальные гранулы выделяют ферменты, модифицирующие zona pellucida (зональная реакция), что делает ее непроницаемой для других сперматозоидов, предотвращая полиспермию.
- Завершение деления. Ооцит завершает второе мейотическое деление одновременно с зональной реакцией, образуя зрелую яйцеклетку с гаплоидным набором хромосом (23,X) и второе полярное тельце.
- Формирование пронуклеусов. Ядро сперматозоида деконденсируется, формируя мужской пронуклеус, а женский пронуклеус образуется из ядра ооцита. В течение следующих часов пронуклеусы мигрируют к центру клетки, синхронизируя свои клеточные циклы.
Завершение процесса и формирование зиготы
В течение 18–24 часов после слияния пронуклеусы растворяют свои ядерные оболочки, и хромосомы выстраиваются на едином веретене деления, завершая истинное оплодотворение – образование диплоидной зиготы (46,XX или 46,XY).
Данный момент знаменует начало эмбриогенеза, причем первые деления контролируются материнскими РНК и белками, накопленными в ооците, тогда как эмбриональный геном активируется лишь на стадии 4–8 клеток.
Динамика раннего эмбриогенеза человека
Процесс эмбриогенеза человека на ранних стадиях включает последовательные этапы дробления, компактизации и формирования бластоцисты.
День 0–1: Образование зиготы (2n, 4c)
После оплодотворения ооцита сперматозоидом образуется зигота с диплоидным набором хромосом (2n) и тетраплоидным содержанием ДНК (4c). На этом этапе завершается второе мейотическое деление, что сопровождается:
- Формированием мужского и женского пронуклеусов (видимых под микроскопом через 16–20 часов после оплодотворения);
- Активацией материнских мРНК, контролирующих ранние стадии развития;
- Началом синтеза белков, необходимых для последующего дробления.
Первое митотическое деление зиготы происходит через 24–30 часов после оплодотворения, приводя к формированию 2 бластомеров. На данной стадии развития эмбриологи должны оценить:
Наличие и характеристика пронуклеусов (ПЯ)
- 2ПЯ (норма). Два четко видимых пронуклеуса (мужской и женский);
- 1ПЯ/3ПЯ (аномалия). Возможно генетические нарушения;
- 0ПЯ. Отсутствие оплодотворения.
Расположение пронуклеусов
- Центральное;
- Периферическое.
Количество и расположение полярных телец
- 2 полярных тельца (норма);
- 1 или >2 (может указывать на аномалии).
Симметрия пронуклеусов
- Равные по размеру;
- Разные по размеру (менее благоприятно).
Наличие вакуолей или других включений
- Отсутствуют (хорошо);
- Присутствуют (может ухудшать качество).
Данный этап характеризуется асинхронностью деления: примерно у 30% эмбрионов наблюдается неравномерное распределение цитоплазмы между бластомерами, что может быть обусловлено качеством ооцита или особенностями активации эмбрионального генома. Одновременно начинается материнско-зиготический переход (MZT, maternal-to-zygotic transition), в ходе которого происходит деградация материнских мРНК и постепенная активация транскрипции генов эмбриона, что знаменует переход контроля развития от материнских факторов к эмбриональным.
День 2: ранняя стадия дробления
На 2-е сутки эмбрион находится на ранней стадии дробления и в норме должен состоять из 2-4 бластомеров (клеток). Оценка включает несколько ключевых параметров:
Количество бластомеров
- 4 клетки (хорошо);
- 3 клетки (допустимо);
- 2 клетки (небольшая задержка);
- 1 клетка или >4 клеток (отклонение от нормы).
Стоит отметить, что количество должно соответствовать сроку развития – в среднем 1 деление каждые 24 часа.
Размер и форма бластомеров
- A. Идеальные (ровные, одинакового размера);
- B. Хорошие (незначительные различия в размерах);
- C. Удовлетворительные (заметная асимметрия);
- D. Плохие (сильно различающиеся по размеру).
Степень фрагментации
- <10% (отлично);
- 10-25% (хорошо);
- 25-50% (удовлетворительно);
- >50% (плохо).
Наличие мультинуклеации
- 0 – отсутствует (норма);
- 1 – присутствует (негативный признак).
Лучшие эмбрионы на этой стадии имеют:
- 4 одинаковых бластомера;
- Минимальную фрагментацию (<10%);
- Отсутствие мультинуклеации.
День 2–3: стадия 6-8 клеток и оценка развития
На 2-3 сутки эмбрион претерпевает 2-е и 3-е митотические деления, достигая стадии 4-8 клеток. В этот период происходит активация генома зиготы (ZGA, zygotic genome activation), при которой на стадии 4-8 бластомеров (~3-й день) начинается активная экспрессия эмбриональных генов, включая ключевые транскрипционные факторы (OCT4, NANOG), ответственные за поддержание плюрипотентности и дальнейшее развитие. Параллельно между бластомерами устанавливаются первые адгезивные взаимодействия, опосредованные белками клеточной адгезии, что способствует компактизации на последующих стадиях.
На 3-й день эмбрион находится на стадии дробления ( 6-8 клеток). Оценка включает:
Количество бластомеров (клеток)
Идеальное развитие на D3: 8 клеток (допустимо 6–10).
- <6 клеток – возможна задержка развития;
- >10 клеток – ускоренное деление (может указывать на хромосомные аномалии).
Степень фрагментации (%)
| Оценка | Фрагментация | Прогноз |
|---|---|---|
| 1 (отлично) | <10% | Высокий потенциал имплантации |
| 2 (хорошо) | 10–25% | Умеренные шансы, зависит от других параметров |
| 3 (удовлетворительно) | 25–50% | Низкий потенциал, возможны хромосомные аномалии |
| 4 (плохо) | >50% | Крайне низкие шансы, обычно не переносится |
Размер и симметричность бластомеров
- A (идеально). Все клетки одинакового размера, без аномалий;
- B (хорошо). Незначительная асимметрия (разница в размерах ≤20%);
- C (удовлетворительно). Сильная асимметрия (размеры клеток сильно различаются);
- D (плохо). Нерегулярные, деформированные бластомеры.
Наличие мультинуклеации (несколько ядер в одной клетке – плохой признак)
- Отсутствует (лучший вариант) – каждая клетка содержит одно ядро;
- Присутствует (плохой прогноз) – связано с повышенным риском анеуплоидии.
День 3–4: стадия морулы
К 3-4 дню эмбрион достигает стадии морулы, для которой характерно увеличение числа клеток до 16-32 за счет продолжающихся митотических делений. Важным событием этого периода является компактизация – процесс сближения бластомеров, опосредованный E-кадгерином (CDH1), что приводит к формированию плотных межклеточных контактов, необходимых для последующей кавитации. Одновременно начинается клеточная дифференцировка, проявляющаяся разделением на внутренние клетки (будущая внутренняя клеточная масса, ICM) и наружные (будущая трофэктодерма, TE).
Оценка морулы или ранней бластоцисты на 4 сутки включает:
- Стадию развития(морула, компактная морула, ранняя бластоциста):
| Код | Стадия | Описание |
|---|---|---|
| Mor | Морула (некомпактная) | Клетки видны отдельно, но начинают сближаться |
| cMor | Компактная морула | Клетки плотно сливаются, границы почти неразличимы |
| EB | Ранняя бластоциста | Появление небольшой полости (бластоцель <50%) |
- Качество компактизации (степень слияния клеток)
- A (отлично). Полная компактизация, клетки слиты равномерно.
- B (хорошо). Неполная компактизация, небольшие участки с различимыми клетками.
- C (удовлетворительно). Слабая компактизация, много отдельных клеток.
- Наличие фрагментации и аномалий
- F1. Минимальная фрагментация (<10%);
- F2. Умеренная фрагментация (10–25%);
- F3. Выраженная фрагментация (>25%);
- MN. Мультинуклеация (плохой прогноз).
День 5: формирование и кавитация бластоцисты
На 5-е сутки формируется ранняя бластоциста, характеризующаяся процессом кавитации – образованием бластоцели (полости, заполненной жидкостью) за счет активного транспорта ионов (Na+-зависимого механизма) и функционирования аквапоринов.
В этот же период завершается дифференцировка клеточных линий: трофэктодерма (TE) образует наружный слой, ответственный за формирование экстраэмбриональных структур, включая плаценту, а внутренняя клеточная масса (ICM) становится источником эмбриобласта, дающего начало тканям эмбриона. Также активируются ключевые транскрипционные факторы, регулирующие дальнейшее развитие эмбриона.
День 6–7: расширение и хетчинг бластоцисты
К 5-6 дню бластоциста достигает финальной стадии предимплантационного развития. Происходит расширение бластоцели и истончение трофэктодермы, что способствует последующему хетчингу. Внутренняя клеточная масса дифференцируется на две субпопуляции: эпибласт, являющийся источником тканей эмбриона, и гипобласт, предшественник внезародышевой мезодермы. Завершающим этапом является хетчинг – процесс выхода бластоцисты из блестящей оболочки (zona pellucida), необходимый для успешной имплантации в эндометрий.
Классификация бластоцист
Система Gardner и Schoolcraft (1999)
Классификация бластоцист в эмбриологии человека основана на морфологических критериях, оцениваемых по системе Gardner и Schoolcraft (1999), которая используется в репродуктивных технологиях для отбора наиболее жизнеспособных эмбрионов перед переносом в матку.
Степень расширения бластоцисты (Blastocyst Expansion)
Отражает степень развития полости (бластоцеля) и готовность к хетчингу (выходу из zona pellucida):
- BL1. Ранняя бластоциста: полость занимает <50% объема.
- BL2. Средняя бластоциста: полость >50%, но оболочка (zona pellucida) еще толстая.
- BL3. Полностью сформированная бластоциста: полость заполняет почти весь эмбрион, оболочка истончена.
- BL4. Расширенная бластоциста: максимальный объем полости, zona pellucida крайне тонкая.
- BL5. Хетчинг: бластоциста начинает выходить из оболочки.
- BL6. Полностью вылупившаяся бластоциста.


Качество внутренней клеточной массы (ICM – Inner Cell Mass)
Будущий эмбрион (а не трофэктодерма). Оценка по плотности и компактности клеток:
- A (Excellent). Многочисленные, плотно упакованные клетки, четкие границы.
- B (Good). Умеренное количество клеток, возможна небольшая фрагментация.
- C (Poor). Мало клеток, выраженная фрагментация или дегенерация.
Качество трофэктодермы (TE – Trophectoderm)
Будущая плацента и внезародышевые структуры. Оценивается клеточная организация:
- A (Excellent). Много однородных клеток, формируют четкий слой.
- B (Good). Небольшая неоднородность или разреженные участки.
- C (Poor). Клетки редкие, деформированные, с вакуолями.


Существует также классификация бластоцист по ESHRE (European Society of Human Reproduction and Embryology). Данная классификация является современным и стандартизированным подходом в оценке качества эмбрионов на стадии бластоцисты.
Классификация ESHRE (Istanbul Consensus, 2011)
Система включает три основных параметра:
- Степень расширения бластоцисты (Expansion stage) – от 1 до 6.
- Качество внутренней клеточной массы (ICM – Inner Cell Mass) – A, B, C.
- Качество трофэктодермы (TE – Trophectoderm) – A, B, C.
Степень расширения бластоцисты (Expansion Stage)
Отражает развитие бластоцеля и готовность к хетчингу:
- 1 (Early blastocyst). Полость <50% объема, клетки компактные.
- 2 (Blastocyst). Полость >50%, но zona pellucida еще толстая.
- 3 (Full blastocyst). Полость занимает почти весь эмбрион, оболочка начинает истончаться.
- 4 (Expanded blastocyst). Максимальное расширение, zona pellucida очень тонкая.
- 5 (Hatching blastocyst). Бластоциста начинает выходить из оболочки.
- 6 (Hatched blastocyst). Полностью вылупившаяся бластоциста.
Чем выше стадия (4–6), тем лучше потенциал имплантации.
Качество внутренней клеточной массы (ICM)
ICM – это будущий эмбрион (зародышевые клетки).
- A (Excellent). Много плотно упакованных клеток, четкие границы.
- B (Good). Умеренное количество клеток, возможна небольшая фрагментация.
- C (Poor). Мало клеток, выраженная дегенерация или вакуолизация.
Лучшая оценка – A, наихудшая – C.
Качество трофэктодермы (TE)
TE формирует плаценту и внезародышевые ткани.
- A (Excellent). Много однородных клеток, образуют четкий эпителий.
- B (Good). Небольшая неоднородность, возможны редкие клетки.
- C (Poor). Клетки редкие, деформированные, с вакуолями.
Основным отличием классификации ESHRE является более стандартизированный подход и такая классификация чаще используется в Европе, в отличии от классификации Gardner, которая используется в США, но принципы оценки обеих классификаций схожи.
Имплантация бластоцисты
Следующим этапом является успешная имплантация бластоцисты в результате строго координированного взаимодействия между эмбриональными и материнскими системами, включающего последовательные процессы хетчинга, адгезии, инвазии и формирования первичных структур плаценты, регулируемые сложными молекулярными механизмами. Имплантация бластоцисты в эндометрий начинается на 5-7-е сутки развития эмбриона.
Имплантация бластоцисты происходит в несколько этапов:
1. Хетчинг
Первоначальным этапом является хетчинг — выход бластоцисты из блестящей оболочки (zona pellucida), который обеспечивается как ферментативной активностью (секреция сериновых протеаз, включая ST6, и лизиновых ферментов — катепсинов и плазмина трофэктодермой), так и механическими факторами (сокращения бластоцисты и увеличение объема бластоцели). После освобождения от блестящей оболочки обнаженная трофэктодерма получает возможность непосредственного контакта с эндометрием.
2. Адгезия
Процесс адгезии бластоцисты к эндометрию опосредован сложными молекулярными взаимодействиями. Ключевую роль играют интегрины (αVβ3, α4β1) на поверхности трофэктодермы, которые связываются с соответствующими лигандами эндометрия, а также взаимодействие L-селектина трофобласта с олигосахаридами эндометриального эпителия. Важным аспектом является локальное снижение экспрессии муцинов (MUC1) в эндометрии, что облегчает контакт между эмбрионом и материнскими тканями.
3. Инвазия и дифференцировка трофобласта
Последующая дифференцировка трофэктодермы приводит к формированию двух функционально различных слоев: цитотрофобласта (внутреннего пролиферативного слоя, характеризующегося экспрессией маркеров Ki-67 и EGFR) и синцитиотрофобласта (наружного инвазивного слоя).
Образование синцитиотрофобласта происходит путем клеточной фузии цитотрофобластов, опосредованной эндогенными ретровирусными белками Syncytin-1 и -2. Инвазивная активность синцитиотрофобласта обеспечивается секрецией матриксных металлопротеиназ (MMP-2, MMP-9), разрушающих внеклеточный матрикс, экспрессией интегринов (α1β1, α5β1), способствующих миграции в строму эндометрия, и взаимодействием с децидуальными клетками через HLA-G, что обеспечивает иммунную толерантность.
4. Децидуализация
Параллельно с процессами со стороны эмбриона в эндометрии происходят существенные изменения, известные как децидуализация – трансформация стромальных клеток под действием прогестерона. Децидуализированные клетки характеризуются увеличением размеров, накоплением гликогена и липидов, а также изменением секреторного профиля (выделение IGFBP-1, PRL, IL-11). Важным аспектом является формирование иммунной толерантности, включающее подавление активности NK-клеток через HLA-E/G, регуляцию макрофагов (с преобладанием M2-фенотипа) и активацию T-регуляторных клеток (FoxP3+).
5. Начало секреции ХГЧ
Синцитиотрофобласт начинает секретировать хорионический гонадотропин (ХГЧ) уже на 7-8-й день развития, что играет ключевую роль в поддержании беременности. ХГЧ не только стимулирует желтое тело к продолжению секреции прогестерона через связывание с рецепторами ЛГ, но и участвует в ангиогенезе (активируя VEGF в эндометрии) и модуляции иммунного ответа (сдвиг в сторону Th2-ответа).
FAQ
1. Сколько времени длится процесс оплодотворения?
2. Что такое 2PN и почему это важно для оценки зиготы?
3. Какое количество клеток должно быть у эмбриона на 3-й день?
4. Что означает фрагментация эмбриона и какой уровень допустим?
5. В чем суть процесса компактизации на 4-е сутки?
6. Что такое хетчинг и когда он происходит?
7. Как расшифровывается оценка бластоцисты, например 4AA?
8. Когда начинается выработка ХГЧ?
Список источников
1.
VOKA 3D Anatomy & Pathology — Complete Anatomy and Pathology 3D Atlas [Internet]. VOKA 3D Anatomy & Pathology.
Available from: https://catalog.voka.io/
2.
Embryology AS in RM and ESIGO, Balaban B, Brison D, Calderon G, Catt J, Conaghan J, Cowan L, Ebner T, Gardner D, Hardarson T, Lundin K, Magli MC, Mortimer D, Mortimer S, Munne S, Royere D, Scott L, Smitz J, Thornhill A, Van Blerkom J, Van Den Abbeel E. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Human Reproduction [Internet]. 2011 Apr 18;26(6):1270–1283.
Available from: https://doi.org/10.1093/humrep/der037
3.
Gardner D.K., Schoolcraft W.B.. Culture and transfer of human blastocysts. Curr Opin Obstet Gynecol. 1999 Jun;11(3):307-11. doi: 10.1097/00001703-199906000-00013. PMID: 10369209.
4.
The Working Group on the update of the ESHRE/ALPHA Istanbul Consensus , Giovanni Coticchio, Aisling Ahlström, Gemma Arroyo, Basak Balaban, Alison Campbell, Maria José De Los Santos, Thomas Ebner, David K Gardner, Borut Kovačič, Kersti Lundin, M Cristina Magli, Saria Mcheik, Dean E Morbeck, Laura Rienzi, Ioannis Sfontouris, Nathalie Vermeulen, Mina Alikani, The Istanbul consensus update: a revised ESHRE/ALPHA consensus on oocyte and embryo static and dynamic morphological assessment,, Human Reproduction, Volume 40, Issue 6, June 2025, Pages 989–1035.
5.
Cockburn K., Rossant J. Making the blastocyst: lessons from the mouse. J Clin Invest. 2010 Apr;120(4):995-1003. doi: 10.1172/JCI41229. Epub 2010 Apr 1. PMID: 20364097; PMCID: PMC2846056.
6.
Boroviak T, Nichols J. Primate embryogenesis predicts the hallmarks of human naïve pluripotency. Development [Internet]. 2017 Jan 15;144(2):175–186.
Available from: https://doi.org/10.1242/dev.145177
7.
Niakan K. K., Eggan K. Analysis of human embryos from zygote to blastocyst reveals distinct gene expression patterns relative to the mouse. Dev Biol. 2013 Mar 1;375(1):54-64. doi: 10.1016/j.ydbio.2012.12.008. Epub 2012 Dec 19. PMID: 23261930.
8.
Schulz KN, Harrison MM. Mechanisms regulating zygotic genome activation. Nature Reviews Genetics [Internet]. 2018 Dec 20;20(4):221–234.
Available from: https://doi.org/10.1038/s41576-018-0087-x
9.
Vento-Tormo R, Efremova M, Botting RA, Turco MY, Vento-Tormo M, Meyer KB, Park JE, Stephenson E, Polański K, Goncalves A, Gardner L, Holmqvist S, Henriksson J, Zou A, Sharkey AM, Millar B, Innes B, Wood L, Wilbrey-Clark A, Payne RP, Ivarsson MA, Lisgo S, Filby A, Rowitch DH, Bulmer JN, Wright GJ, Stubbington MJT, Haniffa M, Moffett A, Teichmann SA. Single-cell reconstruction of the early maternal–fetal interface in humans. Nature [Internet]. 2018 Nov 8;563(7731):347–353.
Available from: https://doi.org/10.1038/s41586-018-0698-6
10.
Turco MY, Moffett A. Development of the human placenta. Development [Internet]. 2019 Nov 15;146(22).
Available from: https://doi.org/10.1242/dev.163428
11.
Norwitz ER, Schust DJ, Fisher SJ. Implantation and the Survival of Early Pregnancy. New England Journal of Medicine [Internet]. 2001 Nov 8;345(19):1400–1408.
Available from: https://doi.org/10.1056/nejmra000763
12.
Wang H, Dey SK. Roadmap to embryo implantation: clues from mouse models. Nature Reviews Genetics [Internet]. 2006 Feb 17;7(3):185–199.
Available from: https://doi.org/10.1038/nrg1808
13.
Aplin JD, Ruane PT. Embryo–epithelium interactions during implantation at a glance. Journal of Cell Science [Internet]. 2017 Jan 1;130(1):15–22.
Available from: https://doi.org/10.1242/jcs.175943
14.
Okae H, Toh H, Sato T, Hiura H, Takahashi S, Shirane K, Kabayama Y, Suyama M, Sasaki H, Arima T. Derivation of Human Trophoblast Stem Cells. Cell Stem Cell [Internet]. 2017 Dec 14;22(1):50-63.e6.
Available from: https://doi.org/10.1016/j.stem.2017.11.004
15.
ESHRE Working Group on Recurrent Implantation Failure, D Cimadomo, M J de los Santos, G. Griesinger, G. Lainas, N. Le Clef, D. J. McLernon, D. Montjean, B. Toth, N. Vermeulen, N. Macklon, ESHRE good practice recommendations on recurrent implantation failure, Human Reproduction Open, [Internet]. Volume 2023, Issue 3, 2023, hoad023.
Available from: https://doi.org/10.1093/hropen/hoad023

